19© OFICINA ESPAÑOLA DE
PATENTES Y MARCAS
ESPAÑA
11© Número de publicación: 2 374 054
21© Número de solicitud: 201031031
51© Int. Cl.:
C12N 15/15 (2006.01)
C07K 14/81 (2006.01)
A61K 38/57 (2006.01)
A61P 7/02 (2006.01)
12© SOLICITUD DE PATENTE A1
22© Fecha de presentación: 03.07.2010
43© Fecha de publicación de la solicitud: 13.02.2012
43© Fecha de publicación del folleto de la solicitud:
13.02.2012
71© Solicitante/s: Instituto de Salud Carlos III
c/ Sinesio Delgado, 6
28029 Madrid, ES
Universidad Central de Venezuela Caracas
72© Inventor/es: Gárate Ormaechea, Teresa;
Perteguer Prieto, María Jesús;
Rodríguez de las Parras, Esperanza y
Valdivieso, Elizabeth
74© Agente: De Elzaburu Márquez, Alberto
54© Título: Nuevo inhibidor de serina proteasa y su uso.
57© Resumen:
Nuevo inhibidor de serina proteasa y su uso. La inven-
ción se refiere a una nueva proteína, identificada median-
te rastreo de una genoteca de cDNA de Anisakis simplex,
así como a su secuencia codificante y a sus vectores de
expresión. Dicha proteína, miembro de la familia de las
serpinas, es capaz de inhibir de manera dependiente de
dosis a la trombina humana, sin afectar al factor Xa de
la coagulación, y sin que la heparina altere su actividad
inhibitoria. Así, la invención se refiere también al uso de
esta proteína para la preparación de un medicamento, es-
pecialmente si se trata de un anticoagulante. Su admi-
nistración tendría especial interés en los casos de hiper-
coagulopatías asociadas a la administración de heparina.
Además, representa una alternativa a los anticoagulantes
derivados de la cumarina, a los que podría sustituir en
cualquiera de las situaciones en las que se administran.
E
S
2
37
4
05
4
A
1
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
DESCRIPCIÓN
Nuevo inhibidor de serina proteasa y su uso.
Campo técnico
La invención se inscribe en el campo de la Biotecnología y en la aplicación de moléculas biológicas en el campo
clínico. Más concretamente, la invención se refiere a un nuevo inhibidor de serina proteasa aislada del nematodo
Anisakis simplex y a su uso como anticoagulante.
Antecedentes de la invención
La cascada de la coagulación sanguínea es un complejo proceso que se desencadena en respuesta a una lesión en
un vaso sanguíneo y que comprende una secuencia compleja de reacciones en cadena, en la que participan varios tipos
celulares y proteínas solubles de la sangre, y que culmina con la formación de un coágulo que evita la pérdida de
sangre a través de la lesión inicial. Se denomina coágulo a una red de proteínas insolubles compuesta por fibrina, en
la que quedan atrapadas otras proteínas, agua, sales, plaquetas y otras células sanguíneas, que impide la salida de la
sangre hasta que el tejido lesionado se repara.
El proceso de prevención de la pérdida de sangre comienza con la constricción del vaso sanguíneo, para disminuir
el flujo sanguíneo al área de la lesión. A continuación, cuando las plaquetas entran en contacto con las fibras de
colágeno expuesto debido a la ruptura del recubrimiento epitelial de los vasos, se produce su agregación, uniéndose
al colágeno para formar un tapón plaquetario, así como su activación, que da lugar a que se liberen distintos factores
como el tromboxano A2, inductor de la agregación plaquetaria, así como fosfolípidos, lipoproteínas y otras proteínas
importantes de la cascada de coagulación.
La cascada de coagulación propiamente dicha, que conduce a la formación de la malla de fibrina que recubre al
tapón, es una secuencia de reacciones proteolíticas que se inicia mediante sustancias activadoras secretadas por el
vaso, por las plaquetas y por proteínas sanguíneas adheridas a la pared del vaso. Tal como se esquematiza en la Fig. 1,
la cascada de coagulación está formada por dos vías, cuya denominación hace referencia al lugar en donde se inicia
la cascada de coagulación en cada una de ellas: la vía extrínseca (que se inicia fuera del vaso sanguíneo, cuando el
factor VII activo (VIIa) se une al factor tisular (TF) o tromboplastina de las membranas de las células que están fuera
de los vasos y originan el complejo VIIa/TF) y la vía intrínseca (que se activa en el interior del vaso sanguíneo, por
el contacto de la pared del mismo con las partículas de lipoproteínas y quilomicrones). Ambas vías confluyen en la
formación de factor X activo (Xa), que da lugar a la conversión de la protrombina en trombina, enzima responsable de
la transformación del fibrinógeno en la fibrina que finalmente genera el coágulo.
La trombina, por ello, es considerada a menudo la enzima clave de la coagulación, por ser la proteasa que da lugar
a la formación de fibrina al actuar sobre el fibrinógeno. Se trata de una serina proteasa, es decir, una hidrolasa que
degrada enlaces peptídicos y que posee en su centro activo un resto de serina esencial para la catálisis enzimática. Se
genera por la acción del factor Xa sobre la protrombina, una glicoproteína que se sintetiza en el hígado y que requiere
vitamina K como cofactor para su síntesis.
Otros factores de coagulación también necesitan vitamina K para su síntesis en el hígado, por lo que el déficit en
esta vitamina puede afectar seriamente a la coagulación de la sangre, dando lugar a aparición de hemorragias.
Adicionalmente a los factores de coagulación, existen otras proteínas muy importantes para el control del proceso:
las del sistema anticoagulante, que evita la formación de trombos o émbolos y la oclusión de las zonas no dañadas,
confinando la formación del coágulo a la zona lesionada. La proteína C, la proteína S, la trombomodulina (TM) y la
antitrombina (AT) son elementos importantes de este sistema.
La antitrombina III en particular se considera la principal inhibidora fisiológica de la coagulación. Es una glico-
proteína que se sintetiza en el hígado sin depender de la vitamina K y que actúa inhibiendo irreversiblemente a varios
factores procoagulantes activos, entre los cuales está la trombina, pero también el factor Xa, la calicreína y los factores
XIa y XIIa. La actividad de la antitrombina III es uno de los mecanismos fisiológicos principales de control de la
cantidad de trombina, aunque otros inhibidores, como el cofactor II de la heparina humana (HCII), también tienen
relevancia en ese aspecto. La acción de la antitrombina, que se produce por la formación de complejos con los factores
de coagulación a los que inhibe, se incrementa notablemente en presencia de heparina, un heteropolisacárido presente
en el endotelio de los vasos sanguíneos y en los gránulos de las células cebadas, que facilita la unión de la antitrombina
III con los correspondientes factores procoagulantes activos.
Existen diversas situaciones clínicas en las que es conveniente retrasar o impedir la coagulación de la sangre.
Para ello, se han empleado tradicionalmente distintos fármacos anticoagulantes, que son compuestos que dificultan
o impiden la agregación plaquetaria o algún otro paso de la cascada de la coagulación. Destaca entre ellos la propia
heparina, un compuesto fisiológico presente en gran cantidad en los mamíferos, que alarga el tiempo de coagulación,
y cuya administración se suele utilizar cuando se precisa de acción anticoagulante rápida y por poco tiempo, como
puede ser en la prevención de trombosis venosas de cirugía, donde se utiliza a bajas dosis.
2
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
La administración de heparina, sin embargo, no siempre es recomendable, pues puede dar lugar a estados de hiper-
coagulabilidad. Así, por ejemplo, entre los pacientes a los que se les administra heparina en el período preoperatorio,
como pueden ser los que van a ser sometidos a un bypass cardiopulmonar, se ha observado que un porcentaje de ellos
presenta un déficit significativo de antitrombina III y necesitan reposición de la misma previa a la realización de la
intervención, bien en forma de plasma fresco congelado, bien como concentrado de antitrombina III: la administración
previa de heparina, para potenciar la acción anticoagulante de la antitrombina III, ocasiona el consumo de la antitrom-
bina y una disminución progresiva de la misma. También se observa reducción de la antitrombina III en los pacientes
que sufren enfermedad hepática, en coagulopatías de consumo con CID (coagulación intravascular diseminada) y en
caso de hemorragias masivas, dando lugar a un aumento del riesgo de episodios trombóticos perioperatorios. Por ello,
también en estos casos se realiza reposición de la antitrombina III, mediante el uso de plasma fresco congelado o
concentrados de antitrombina. Aunque, en general, se considera que el tratamiento previo al que se someten los con-
centrados de antitrombina III disponibles en Europa y Estados Unidos hace que sea prácticamente nulo el riesgo de
transmisión de agentes infecciosos, siempre existe un riesgo residual y además son productos extremadamente caros,
por lo que dan lugar a un sensible aumento de los costes del tratamiento.
Otro estado de hipercoagulabilidad, muy temido en pacientes críticamente enfermos, es la trombosis relacionada
con la trombopenia asociada a la heparina. La heparina provoca un grado leve de trombocitopenia, trastorno que se
ha comprobado que es mediado por un anticuerpo que estimula la agregación y activación plaquetaria en presencia
de heparina. Los pacientes que padecen este trastorno suelen sufrir episodios venosos, así como accidentes arteriales
trombóticos graves. Si el síndrome no se identifica en seguida, puede conducir a la pérdida de miembros, infartos
viscerales y cardíacos e, incluso, mortalidad en grado elevado. Su tratamiento incluye el cese inmediato de la adminis-
tración de heparina, sustituyéndola en ocasiones por heparina de bajo peso molecular (que tiene predominantemente
una actividad anti-factor Xa, aunque es también dependiente de antitrombina III) o combinándola con hirudina para
disminuir la dosis administrada; también puede utilizarse el tratamiento antiagregante con ácido acetilsalicílico como
alternativa.
Todos estos problemas han llevado a que se busquen alternativas con las que sustituir la heparina.
Otros anticoagulantes de uso común son los anticoagulantes dicumarínicos, los cuales son inhibidores de la vita-
mina K, lo que da lugar a que aparezcan en la sangre formas inactivas de los factores en cuya síntesis interviene dicha
vitamina. Así, la acción de estos anticoagulantes, como sucede con la heparina, no se limita a un paso concreto de la
cascada de coagulación, sino que afecta a varios puntos de la misma, dificultando su control preciso y aumentando
el riesgo de que se produzcan hemorragias. Además, el tratamiento continuado con anticumarínicos, como sucede,
por ejemplo, en los pacientes con válvulas cardiacas o prótesis mecánicas o articulares, así como en los que pade-
cen fibrilación auricular o embolia pulmonar, incrementa el riesgo de calcificación de las arterias y de las válvulas
cardíacas.
La importancia del control de la coagulación en distintas situaciones clínicas ha llevado a buscar otros nuevos
anticoagulantes, teniendo preferencia por aquellos que actúan exclusivamente en un paso concreto de la cascada de
coagulación. Así recientemente se han descrito una serie de compuestos de síntesis que específicamente inhiben a la
trombina (dabigatran) y al factor Xa (rivaroxaban), cuyo uso está aprobado para la prevención de tromboembolismo
venoso tras prótesis total de rodilla y cadera (Ufer, 2010). Además el dabigatran está siendo evaluado en ensayos
clínicos de fase III como anticoagulante oral para diferentes patologías como síndrome coronario agudo, enfermos
crónicos, y estados relacionados con cirugías cardiacas (Ahrens et al., 2010).
Por otra parte, también se han tratado de caracterizar moléculas de seres vivos con propiedades anticoagulantes.
Algunas de las proteínas con actividad anticoagulante pertenecen al grupo de las serpinas. Se denomina así a una
superfamilia de proteínas, a la que pertenecen la antitrombina y la antitripsina, que comparten una estructura similar, y
que deben su nombre a que la mayoría de ellas inhiben serina proteasas, aunque también se han identificado serpinas
que inhiben caspasas y cisterna proteasas similares a la papaína, a las que se denomina serpinas de clase cruzada
(Sakata et al., 2004; Law et al., 2006). Forman un grupo diverso, al que pertenecen varias proteínas humanas, así como
moléculas de plantas, bacterias, parásitos pluricelulares como helmintos nematodos, y ciertos virus. Las serpinas han
evolucionado para modular la hidrólisis de los enlaces peptídicos mediante un mecanismo de inhibición irreversible
similar al de los sustratos suicidas (Silverman & Lomas, 2004), compuestos que se enlazan al centro activo de una
enzima y químicamente se transforman en una especie reactiva que modifica de forma irreversible al aminoácido
del sitio activo. Las serpinas, por su parte, experimentan importantes cambios en su estructura en el proceso de la
inhibición enzimática.
Las serpinas en las que se ha identificado actividad anticoagulante se han aislado de diversos organismos. Así,
por ejemplo, puede citarse la proteína PTI de origen humano descrita por Coughlin et al. (Coughlin et al., 1993),
que supuestamente es una molécula intracelular que carece de péptido señal, pero que tiene capacidad de inhibir la
trombina de manera independiente a la presencia de heparina, y que inhibe también tanto la tripsina como el factor de
coagulación Xa (Morgenstern et al., 1994). También se ha aislado una serpina del virus mixoma (Nash et al., 1998)
que, además de inhibir la trombina y la catepsina G, inhibe también el factor Xa. Otra serpina capaz de inhibir trombina
se ha detectado en el cangrejo Tachipleus tridentatus (Miura et al., 1994).
Otras muchas serpinas no presentan actividad anticoagulante. Así, en organismos evolutivamente bastante distantes
de cualquiera de los mencionados, como son los nematodos, no se han descrito serpinas que actúen sobre las serina
3
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
proteasas de la coagulación, ni siquiera en los nematodos parásitos, a pesar de que, recientemente, se ha publicado
que, en general, los inhibidores de serina proteasas de parásitos de la familia de las serpinas están entre los mejores
ejemplos de genes que interaccionan con los procesos fisiológicos del hospedador (Zang & Maizels, 2001). Se sabe
que los inhibidores de proteasas de los parásitos no sólo interaccionan con proteasas endógenas del mismo parásito,
regulando su propia actividad como proteasas, sino que se supone que juegan otros papeles importantes en la defensa
contra la digestión por las proteasas del hospedador, en la inhibición de las proteasas del hospedador implicadas en
la respuesta inmune, o incluso actuando como inmunomoduladores. Así, en los nematodos, se han asignado algunos
papeles hipotéticos a las serpinas como, por ejemplo, la protección del ambiente hostil proteolítico. Pero sólo en el
caso de la serpina SPN-2 de Brugia malayi hay evidencias experimentales que apoyan que las serpinas tengan en los
nematodos parásitos una función de evasión de la respuesta inmune del hospedador, pues la serpina SPN-2 es capaz
de inhibir dos serina proteasas derivadas de neutrófilos (Zang et al., 1999), la elastasa y la catepsina G, aunque no se
ha descrito que dicha serpina sea capaz de actuar sobre las serina proteasas de la coagulación.
En nematodos no parásitos, de vida libre, como es el caso de Caenorhabditis elegans, se han descrito hasta nueve
serpinas (Pak et al., 2004), para ninguna de las cuales se ha mencionado que tenga actividad antitrombina. Además, en
el momento de su aislamiento, se consideró que sus características eran suficientemente distintivas de otros grupos de
serpinas como para crear para ellas un nuevo clade, diferente de los establecidos hasta entonces. Aun requiriendo una
clasificación específica para ellas, Pak et al. (2004) comentan que las serpinas de Caenorhabditis elegans se parecen
fundamentalmente al clade B de serpinas, que son proteínas intracelulares. Una de estas nueve serpinas, SRP-2, es
considerada por los autores del artículo una serpina inhibitoria clásica de clase cruzada; esto es así porque inhibe
principalmente a la granzima B (serina proteasa) y, en menor medida, a la catepsina V (cisterna proteasa). Además de
no sugerirse en el artículo, es improbable que SRP-2 tenga actividad antitrombina, porque los aminoácidos presentes
en su centro activo, P1-P1’, son la pareja Glu-Met, mientras que la trombina es una enzima Arg específica, aunque no
todos sus inhibidores presentan dicho aminoácido en su sitio reactivo, siendo el HCII una de esas excepciones.
En nematodos parásitos sí se han descrito inhibidores de proteasas que inhiben la coagulación, pero pertenecen a
otras familias inhibidores de serina proteasas, tales como la de las esmapinas. Es el caso, por ejemplo, de los inhibi-
dores de las serina proteasas caracterizados a partir de Ancylostoma caninum y Ancylostoma ceylanicum, nematodos
intestinales que causan graves anemias. Ninguno de los inhibidores identificados a partir de estos nematodos inhibe
directamente la trombina, sino que actúan sobre otras serina proteasas de la coagulación: NAP5, sobre los factores Xa
y Xia; NAP6, sobre el factor Xa; AceAP1 sobre el factor Xa; y NAP2, sobre el complejo factor VIIa/TF (Capello et
al., 1995; Stassens et al., 1996).
Otro de los nematodos parásitos en los que se ha identificado alguna proteína con capacidad anticoagulante es
Anisakis simplex. Anisakis simplex es un nematodo parásito que infecta a mamíferos acuáticos, produciendo úlceras
gástricas, con gusanos unidos a la mucosa gástrica o libres en el estómago, así como exudados hemorrágicos y perfora-
ción de la cavidad abdominal (Geraci & St. Aubin, 1987). El ser humano es un hospedador accidental que adquiere la
infección mediante la ingestión de larvas de Anisakis simplex presentes en alimentos de origen marino crudos o poco
cocinados. La infección de seres humanos por Anisakis simplex es una causa bien conocida de enfermedad gastrointes-
tinal, con síntomas clínicos de moderados a graves tales como nauseas, vómitos, diarrea, dolor abdominal y epigástrico
(Ishikura et al., 1993), encontrándose a menudo sangre oculta en el jugo gástrico o las heces (Bier, 1988). En muchos
casos los síntomas gastrointestinales están asociados con alteraciones inmuno lógicas, habitualmente reacciones de
tipo alérgico (Audicana & Kennedy, 2008). Sin embargo, a pesar de los muchos estudios que se están efectuando
sobre este parásito, por el alto grado de infección que se está detectando en seres humano, existe un espacio vacío
en el conocimiento de genes que interaccionan con procesos fisiológicos del hospedador. En Anisakis simplex sólo se
han descrito inhibidores de serina proteasas pertenecientes a la familia de Kunitz y a la de las esmapinas (Morris &
Sakanary, 1994; Nguyem et al., 1999; Kobayashi et al., 2007; Kobayashi et al., 2008). Las esmapinas descritas en
Anisakis simplex (ASPI-1 y ASPI-2) inhiben la elastasa y en el caso de ASPI-3, se desconoce cual es su diana. Aunque
las esmapinas caracterizadas en otros nematodos, como Ancylostoma caninum y Ancylostoma ceylanicum presentan
actividad anticoagulante, su punto de intervención en la cascada de coagulación es la inhibición de los factores Xa y
VIIa. Hasta ahora, en el nematodo Anisakis simplex no se han identificado anticoagulantes de la familia de las serpinas.
Como se ve, los factores anticoagulantes capaces de interaccionar directamente con la trombina comercialmente
disponibles no abundan. Además, en muchos casos, su actividad depende o se ve potenciada por la presencia de
heparina. Dada la importancia que la prevención de la coagulación de la sangre tiene en muchas situaciones clínicas,
es importante disponer de anticoagulantes alternativos a los actualmente existentes. Dichos anticoagulantes deberían
actuar preferiblemente sobre la trombina de manera que, si existe alguna deficiencia o alteración tanto en la vía
extrínseca como en la intrínseca de la coagulación, la actividad del anticoagulante no se vería afectada, porque actuaría
específicamente sobre la molécula clave y final de la cascada de coagulación: sobre la enzima que reacciona con el
fibrinógeno y lo convierte en fibrina que forma el coágulo. Más preferiblemente, el anticoagulante debería ser selectivo,
con acción directa sobre la trombina sin necesitar heparina, por lo que su uso evitaría los efectos perjudiciales derivados
del empleo indiscriminado de este último compuesto y, además, sería de utilidad potencial en aquellas situaciones
en las que no se pueden emplear heparinas, así como en pacientes inmunodeprimidos o sometidos a tratamientos
continuados con concentrados de plasma fresco o antitrombina III, disminuyendo con ello el riesgo de que adquieran
alguna enfermedad infecciosa de transmisión parenteral y su alto coste económico.
La presente invención proporciona una solución a esos problemas.
4
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Compendio de la invención
La invención se basa en la caracterización bioquímica y bioinformática de una serpina recombinante de Anisakis
simplex, a la que en lo sucesivo se hará referencia en la presente solicitud como AniSerp. En particular, la invención
se basa en el descubrimiento de que dicha serpina es capaz de inhibir la trombina humana, de manera dependiente de
dosis, sin afectar al factor Xa de la coagulación y sin que la heparina tenga ningún efecto en esta actividad inhibitoria.
Además, AniSerp es también capaz de inhibir, aunque con menor actividad y de manera reversible, a las catepsinas G
y L.
La capacidad de esta nueva serpina de inhibir a la trombina y no al factor de la coagulación Xa (la otra serina
proteasa que es inhibida por la antitrombina III) la hace adecuada para uso como anticoagulante en pacientes en los
que se sospeche que pueda existir alguna deficiencia o alteración tanto en la vía extrínseca como en la vía intrínseca de
coagulación, pues el empleo de esta nueva serpina no interferiría, ya que actúa específicamente sobre la molécula clave
y final de la cascada de coagulación. Esto hace que la utilización de AniSerp como anticoagulante presente la ventaja,
frente al uso de otros anticoagulantes, de que se puede administrar a pacientes inmunodeprimidos, o sometidos a trata-
mientos continuados con concentrados de plasma fresco o antitrombina III, que además de ser caros, los pone en riesgo
de adquirir alguna enfermedad infecciosa de transmisión parenteral, riesgo que se elimina con la utilización de una
proteína aislada o sintética. Así, la expresión de AniSerp en sistemas de expresión a través de hospedadores transfor-
mados con vectores recombinantes que contengan una secuencia codificante de AniSerp bajo el control de secuencias
reguladoras apropiadas, que permitan su expresión en dicho hospedador, facilitaría la producción y aislamiento de la
proteína recombinante, lo que sería de utilidad para la preparación de formas de administración médicas más seguras,
disminuyendo el riesgo de transmisión de enfermedades infecciosas por vía parenteral, además de abaratar los costes
de los tratamientos alternativos.
Por otra parte, el hecho de que la actividad anticoagulante de AniSerp no se vea potenciada por la heparina po-
sibilita la aplicación terapéutica de AniSerp en situaciones en las que existe riesgo de que se desarrollen estados de
hipercoagulabilidad que se asocian con la heparina, tales como el déficit adquirido de antitrombina, que se produce
muchas veces en el contexto de la terapia con heparina, o incluso para el tratamiento de dichos estados de hipercoagu-
labilidad. Una de las situaciones en las que podría ser adecuada su administración serían los períodos preoperatorios
previos a ciertas intervenciones quirúrgicas, tales como las de bypass cardiopulmonar, lo que permitiría rebajar las
cantidades de heparina utilizadas, evitándose el consumo masivo de antitrombina producido por la heparina y la hi-
percoagulabilidad generada como consecuencia de la disminución de dicha proteína. También podría administrarse
posteriormente a la operación quirúrgica, en lugar de los concentrados de antitrombina III, extremadamente caros, que
se utilizan a menudo para reponer la antitrombina III cuando se produce un déficit de la misma. Igualmente estaría
indicada en otras situaciones clínicas en las que la antitrombina III está reducida, tales como la enfermedad hepática,
en coagulopatías de consumo con CID (coagulación intravascular diseminada) y hemorragias masivas, así como en la
trombosis relacionada con la trombopenia asociada a la heparina.
AniSerp, además, supone una alternativa como anticoagulante a los derivados de la cumarina, respecto a los cuales
presenta las ventajas de actuar sobre la trombina sin interferir con el factor Xa, posibilitando un control más preciso
de las dosis según los requerimientos del paciente y sus condiciones específicas, disminuyendo con ello el riesgo de
hemorragias. Además, el hecho de que AniSerp no interraccione con la vitamina K disminuye también el riesgo de
calcificación arterial y de las válvulas asociado al consumo continuado de anticoagulantes derivados de la cumarina.
De esta manera, AniSerp representa una alternativa adecuada para ser suministrada como anticoagulante, por ejemplo,
a los enfermos con válvulas cardiacas o prótesis mecánicas o articulares, así como en los que padecen fibrilación
auricular, síndrome coronario agudo, embolia pulmonar o enfermedad cardíaca crónica.
Su seguridad como anticoagulante se ve reforzada, además, por el hecho de que AniSerp no es reconocida por
anticuerpos IgE de pacientes que padecen anisakidosis, lo cual indica que esta nueva serpina no presenta propiedades
alergénicas/inmunogénicas, una característica muy importante para cualquier compuesto que se desee utilizar como
anticoagulante.
Merece destacarse también que la secuencia proteica de AniSerp presenta un grado de identidad relativamente
baja (menor del 40%) con otras serpinas, entendiendo como tal el grado de invariabilidad entre las secuencias de
aminoácidos. Así, por ejemplo, en lo que se refiere a serpinas mencionadas en la presente solicitud, los porcentajes
de identidad obtenidos con las secuencias proteicas accesibles a través del European Bioinformatic Institute (bases de
datos UniProt, aaGeneSeq, Euro Patents, Japan Patents, US Patents y Korea Patents), utilizando el algoritmo FASTA
y el programa fasta 3, son: 33,1% con la serpina de Tachipleus tridentatus (GenBank D14483); 37,4% con la proteína
humana PTI (SPB6_HUMAN, nº acceso: P35237 en UniProtKB); 35,1% con la serpina SRP-2 de Caenorhabditis
elegans (GenBank AY525079); 30,3% con la serpina de Brugia malayi (GenBank U04206).
Por todo lo cual, la invención se refiere, en un primer aspecto, al polipéptido de la invención, es decir, un polipéptido
que comprende la secuencia de aminoácidos de AniSerp (bien en su forma madura (SEQ ID NO:3) sin péptido señal,
o en la forma inmadura (SEQ ID NO:2) con péptido señal, o un polipéptido que presenta su misma actividad y que
guarda un alto porcentaje de identidad (superior al de otras serpinas con actividad anticoagulante conocidas) con
AniSerp. Así, la invención se refiere, a un polipéptido cuya secuencia de aminoácidos comprende:
a) la secuencia representada por SEQ ID NO:3, o
5
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
b) una secuencia idéntica al menos en un 40% a SEQ ID NO:3 que presenta estructura de serpina y capacidad
de inhibir a la trombina humana.
Se prefiere que la secuencia de aminoácidos comprenda la secuencia representada por SEQ ID NO:3. También son
realizaciones posibles de la invención aquellas en las que el polipéptido comprende una secuencia de aminoácidos que
presenta estructura de serpina con capacidad de inhibir la trombina humana, en la que dicha secuencia es idéntica a
SEQ ID NO:3 en un porcentaje que se selecciona del grupo del 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95%, 99%, 99,5%, y
99,9%.
Tal como se ha mencionado, no sólo la forma madura, carente del péptido señal, sino la forma inmadura de
AniSerp, que comprende a la forma madura y al péptido señal, está comprendida también dentro del alcance de la
invención. Por ello, son también realizaciones posibles del polipéptido de la invención aquellas en la que su secuencia
comprende:
a) la secuencia representada por SEQ ID NO:2, o
b) una secuencia idéntica al menos en un 40% a SEQ ID NO:2 que presenta estructura de serpina con capa-
cidad de inhibir a la trombina humana.
Se prefiere que la secuencia de aminoácidos comprenda la secuencia representada por SEQ ID NO:2. También son
realizaciones posibles de la invención aquellas en las que el polipéptido comprende una secuencia de aminoácidos que
presenta estructura de serpina con capacidad de inhibir la trombina humana, en el que dicha secuencia es idéntica a
SEQ ID NO:2 en un porcentaje que se selecciona del grupo del 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95%, 99%, 99,5%, y
99,9%.
En otra posible realización de este aspecto de la invención, el polipéptido es una proteína de fusión que comprende,
adicionalmente, a la secuencia de AniSerp o de una serpina capaz de inhibir a la trombina humana con un alto grado de
identidad con ella, la secuencia de una segunda proteína, de manera que el polipéptido es una proteína de fusión. Esta
segunda proteína puede ser, por ejemplo, la glutatión-S-transferasa, como en los Ejemplos de la presente solicitud, u
otra proteína cualquiera de interés.
AniSerp, como se ha comentado, presenta la particularidad de que su capacidad de inhibir la actividad de la
trombina no se ve alterada por la presencia de heparina. Por ello, es una realización compatible con cualquiera de las
anteriores aquella en la que el polipéptido de la invención presenta una capacidad de inhibir trombina que no se ve
afectada por la presencia de heparina.
Igualmente, es una realización compatible con cualquiera de las anteriores aquella en la que el polipéptido, ade-
más, presenta capacidad de inhibición de las catepsinas G y L, tal como se describe para AniSerp en los Ejemplos
presentados más adelante en la presente solicitud.
En un segundo aspecto, la invención se refiere a una molécula de ADN que comprende una secuencia que codifica
el polipéptido de la invención, es decir, a una molécula aislada de ácido nucleico que comprende una secuencia que
codifica una serpina con capacidad de inhibir la trombina humana, seleccionada del grupo que consiste en:
a) una secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia polipeptídica idéntica al menos en un 40% a
la secuencia representada por SEQ ID NO:3
b) una secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia polipeptídica idéntica al menos en un 40% a
la secuencia representada por SEQ ID NO:2;
c) una molécula de ácido nucleico complementaria a una de las anteriores.
Son realizaciones preferidas de dicho aspecto de la invención aquellas en las que la secuencia comprendida en la
molécula de ácido nucleico codifica una secuencia polipeptídica idéntica a la representada por SEQ ID NO:3 o a la
representada por SEQ ID NO:2. En este último caso, la molécula de ácido nucleico puede tener la secuencia de la
molécula aislada que se describen en los Ejemplos de la presente solicitud, es decir, la secuencia representada por
SEQ ID NO:1. También son posibles realizaciones de este aspecto de la invención aquellas en las que la molécula
de ácido nucleico comprende un fragmento de secuencia que codifica una secuencia polipeptídica que es idéntica
a la representada por SEQ ID NO:2 al menos en un porcentaje que se selecciona del grupo de 50%, 60%, 70%,
80%, 90%, 95%, 99%, 99,5%, 99,9%, prefiriéndose particularmente que los cambios en aminoácidos sean cambios
conservativos.
Tal como se utiliza en la presente solicitud, se entiende por cambios (sustituciones conservativas) de aminoácidos
los cambios en una posición específica de la secuencia polipeptídica que preservan las propiedades físico-químicas
del residuo original. Existen diversos algoritmos para valorar esta cuestión pero la manera más general y estricta de
6
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
considerar que un cambio es conservativo es considerar que se produce cuando se intercambian aminoácidos con
cadenas laterales de similares tamaños y parecida carga o polaridad en condiciones fisiológicas. Así, serían cambios
conservativos los cambios entre:
- ácido glutámico (Glu) y ácido aspártico (Asp) (aminoácidos ácidos, con carga negativa a pH fisiológico);
- glutamina (Gln) y asparagina (Asn) (aminoácidos básicos, con carga positiva a pH fisiológico);
- valina (Val), leucina (Leu) e isoleucina (Ile): aminoácidos hidrofóbicos de cadena corta; dependiendo de
su función estructural específica en el plegamiento de la proteína y el mantenimiento de su estructura,
pueden incluirse también en este grupo cisterna (Cys) (si su cambio no da lugar, por ejemplo, a la pérdida
de un puente disulfuro), glicina (Gly) (si su pequeño tamaño no es imprescindible para permitir un cambio
brusco en la progresión de la estructura secundaria, por ejemplo, sino que es más importante su polaridad)
o metionina (Met).
- serina (Ser) y treonina (Thr), aminoácidos polares a pH fisiológico que presentan un grupo -OH en su
cadena lateral.
Otro objeto de la invención es un vector de expresión que comprende una secuencia de ADN de la invención, unida
operativamente a una secuencia de control de la expresión. El vector de expresión puede ser, por ejemplo, un plásmido,
como en el Ejemplo 2 de la presente solicitud, o un sistema más complejo, como, por ejemplo, un virus recombinante.
Un objeto adicional de la invención es una célula hospedadora transformada con un vector de expresión de la inven-
ción. La célula hospedadora puede ser, entre otras, una bacteria, una levadura, o una célula derivada de un organismo
eucariota superior, tal como una célula humana o derivada de células humanas. En cada uno de los casos, lógicamente,
el vector de expresión con el que se haya transformado la célula hospedadora comprenderá como secuencia de control
de la expresión unida operativamente a la secuencia que codifica la serpina idéntica o similar a la forma inmadura o
madura de AniSerp (SEQ ID NO:2 ó SEQ ID NO:3), una secuencia de control que pueda dar lugar a proteína codifica-
da en dicha célula hospedadora. Así, por ejemplo, si se desea la expresión en una bacteria, la secuencia codificante de
la serpina estará unida operativamente a un promotor que permita la expresión en esa bacteria; si se desea la expresión
en una célula eucariótica, la secuencia codificante de la serpina estará unida operativamente a, al menos, un promotor
que permita la expresión en esa célula. Tal como se utiliza en la presente solicitud, se entiendo por “transformación”
cualquier proceso en el que se introduce un ácido nucleico exógeno en una célula.
Un objeto más es un método para producir una proteína que comprende las etapas de:
a) cultivar la célula hospedadora transformada con un vector de expresión de la invención en condiciones
que permiten la expresión del polipéptido con actividad de serpina capaz de inhibir la trombina humana
codificado en dicho vector de expresión;
b) purificar el polipéptido sintetizado en la etapa a) de la célula o del medio celular.
Otro aspecto adicional de la invención se refiere a un anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido que
comprende la secuencia de SEQ ID NO:2 o la secuencia de una serpina capaz de inhibir la trombina humana cuya
secuencia de aminoácidos difiere de la secuencia de SEQ ID NO:2 únicamente por sustituciones conservativas de ami-
noácidos. Por sustituciones conservativas deben entenderse cambios en una posición específica de un aminoácido que
preservan las propiedades físico-químicas del residuo original. Sustituciones conservativas típicas son la sustitución
de un residuo ácido por otro (cambios entre los ácidos glutámico y aspártico), cambios de un residuo básico por otro
(cambios entre glutamina y asparagina), cambios de un residuo apolar por otro (alanina, valina, leucina, isoleucina ...).
En un aspecto más, la invención se refiere al uso del polipéptido de la invención como agente anticoagulante. Así,
otro aspecto de la invención es el uso del polipéptido de la invención (un polipéptido que comprende la secuencia de
una serpina capaz de inhibir la trombina humana con al menos un 40% de identidad con SEQ ID NO:2 y/o SEQ ID:3)
para la preparación de un medicamento. Preferiblemente, el medicamento estará destinado a ser utilizado como anti-
coagulante. Se prefiere especialmente que el medicamento esté destinado a pacientes en los que se sospeche que puede
haber alguna alteración en proteínas de la cascada de coagulación distintas de la trombina, a pacientes inmunodepri-
midos, a pacientes con trastornos hepáticos, a pacientes con coagulopatías de consumo con coagulación intravascular
diseminada, a pacientes que presenten estados de hipercoagulabilidad asociados al uso de heparina o a pacientes con
déficit de antitrombina III. También se tiene particular preferencia por la administración del medicamento como anti-
coagulante durante períodos perioperatotios en general como la cirugía cardiopulmonar (con o sin la administración
simultánea de heparina), la cirugía traumatológica especialmente en tratamientos de sustitución completa de cadera
y rodilla. En otra posible realización del uso de la invención, el polipéptido de la invención puede utilizarse como
alternativa a los anticoagulantes convencionales tales como los anticoagulantes cumarínicos, estando destinado a pa-
cientes con patologías como síndrome coronario agudo, fibrilación auricular, embolia pulmonar, enfermedad coronaria
crónica, o a enfermos con válvulas cardíacas o vasculares o con prótesis mecánicas o articulares.
7
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Breve descripción de las figuras
Fig. 1: Cascada de coagulación. El esquema muestra la secuencia de reacciones entre factores de coagulación que
conforman las vías extrínseca (parte izquierda) e intrínseca (parte derecha) de la coagulación y que confluyen en la
generación del factor Xa y las etapas comunes subsiguientes (nombres de las proteínas en negrita). Se indican junto a
las reacciones factores complementarios (Ca2+: calcio, PL: fosfolípidos ...). También se indican los puntos de acción
de proteínas implicadas en el sistema anticoagulante (líneas discontinuas punteadas, terminadas en elipses), así como
las reacciones potenciadas por la trombina (líneas discontinuas terminadas en flecha).
Fig. 2: Actividad como inhibidor de AniSerp: El gráfico muestra el efecto del inhibidor recombinante AniSerp
(AniSerp-GST: proteína de fusión AniSerp con glutation-S-transferasa) sobre la actividad proteolítica de las enzimas
indicadas bajo las parejas de barras (proteasa endógena de Anisakis simplex; plasmina humana; trombina humana;
catepsina B; Factor Xa; tripsina; catepsina L; catepsina G), representada como % de actividad residual calculado con
respecto a la actividad detectada en presencia de la proteína GST sola.
Fig. 3: Efecto del inhibidor recombinante AniSerp-GST sobre la actividad proteolítica de la trombina humana. El
gráfico muestra el porcentaje de fluorescencia residual debida al AMC liberado del sustrato Boc-Val-Pro-Arg-AMC
por la trombina, en función de la concentración de la proteína de fusión AniSerp-GST presente. Los datos mostrados
son la media±desviación estándar (S.D.) de tres experimentos independientes llevados a cabo por triplicado. Las barras
indican la S.D.
Fig. 4: Modelos estructurales basados en la homología de las formas latente (panel B) y activa (panel C) de AniSerp
(no unida a trombina). El panel A muestra el alineamiento de múltiples secuencias entre AniSerp (secuencia encabe-
zada por la palabra “serpin”) y los moldes 1DVN_A (forma latente del inhibidor 1 del activador de plasminógeno
humano) y 2DUT_D (conformación nativa de la proteína MENT: Myeloid and Erythroid Nuclear Termination stage-
specific: proteína de terminación nuclear eritroide y mieloide específica de estadio). Los paneles B y C muestran los
modelos estructurales de las formas latente (panel B) y activa (panel C) de AniSerp deducidos a partir de los moldes
1DVN_A y 2DUT_D respectivamente, modelos en 3D en los que se indica la posición del bucle del centro reactivo
(RCL).
Fig. 5: Modelo de la interacción entre la serpina de Anisakis simplex (AniSerp) y la trombina humana:
- El panel A muestra un modelo de tres dimensiones en el que la trombina humana (parte superior del dibujo)
aparece unida a la serpina de Anisakis simplex (parte inferior del dibujo del panel); se indica la localización del RCL
(residuos del bucle catalítico) de la serpina de Anisakis simplex en el surco estructural de la trombina. Las zonas de
color más oscuro sobre la superficie de la trombina indican zonas de carga electrostática teórica positiva o negativa.
- El panel B: Representación, como modelo de bolas y varillas, de los residuos de la cadena pesada de la trombina
humana (leyendas en negrita) que entran en contacto con los aminoácidos Pro365 a Ile372 de AniSerp.
- El panel C: Detalle de la interacción entre AniSerp y los residuos His43 (H43), Asp99 (D99) y Ser205 (S205) de
la triada catalítica de la trombina humana.
Fig. 6: Alineamientos de secuencia de la Serpina de Anisakis simplex (secuencia encabezada con la leyenda “ser-
pin”), Antitrombina-III humana (secuencia encabezada con la leyenda “1ATH_A”) y el cofactor II de la heparina
humana (secuencia encabezada con la leyenda “1JMO”). Las esferas oscuras representadas bajo la secuencia 1JMO
indican los residuos clave implicados en la unión a la heparina descritos para el cofactor II de la heparina.
Descripción de la invención
Tal como se ha mencionado anteriormente, la invención se refiere a una nueva proteína del nematodo Anisakis sim-
plex, que tiene actividad anticoagulante. Concretamente, su actividad se basa en su capacidad para inhibir la trombina
humana, de forma dosis dependiente, e independiente de la presencia de heparina. Además, la nueva proteína tiene
también capacidad de inhibir, aunque en menor medida, la actividad de otra serina proteasa, la catepsina G, así como
la de una cisterna proteasa, la catepsina L. A dicha proteína se alude en la presente solicitud con la abreviatura de
AniSerp.
AniSerp es el resultado de un rastreo con anticuerpos de una genoteca de cDNA del nematodo Anisakis simplex y
de la clonación de un nuevo inhibidor de serina proteasas de entre todos los EST (Expressed sequence tags. marcadores
de secuencias expresadas) cribados. Dicho cDNA permite la obtención de una proteína de 397 aminoácidos (SEQ ID
NO:2), de los cuales los 25 primeros constituyen un péptido señal que parecen conferir a AniSerp una naturaleza
secretora, a diferencia de lo que sucede con otras serpinas, como PTI o las serpinas identificadas en Caenoharbditis
elegans, que parecen ser intracelulares.
AniSerp es estructuralmente una serpina, pues presenta el ensamblaje tridimensional clásico de esta familia de
inhibidores, que es necesario para ejercer su mecanismo de acción. AniSerp tiene una conformación compuesta por
nueve hélices α y tres hojas β, con un hipotético centro reactivo (RCL: reactive centre loop) de 27 residuos aminoací-
dicos (347-GSEAAAATGLFMVFRSSRPMPVTPPIR-373), que queda expuesto en su forma activa. Esto la convierte
8
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
en el primer inhibidor tipo serpina de nematodos parásitos que presenta capacidad anticoagulante, por lo que no era
obvio esperar que un nematodo, Anisakis simplex, produjera una proteína con actividad anticoagulante que tuviera
actividad de inhibidor de serina proteasas y que perteneciera a la familia de las serpinas. Tal como se ha comentado
previamente, se habían caracterizado anteriormente en otros nematodos inhibidores de serina proteasas pertenecientes
a otras familias, tales como las esmapinas, que presentan actividad anticoagulante. Así, por ejemplo, las esmapinas
NAP5, NAP6 y NAP2 de Ancylostoma ceylanicum, que son responsables de las propiedades anticoagulantes de este
parásito intestinal hematófago, causante de graves anemias. Cada una de estas esmapinas afecta a un tipo diferente de
serina proteasa de la coagulación de la sangre, pero ninguna inhibe directamente a la trombina (Capello et al., 1995,
Stassens et al., 1996), como lo hace AniSerp. Además, tanto la secuencia de aminoácidos como la estructura de estos
inhibidores es diferente de la de AniSerp.
En lo que se refiere a las serpinas identificadas en nematodos de vida libre como Caenorhabditis elegans, presentan
bastantes diferencias con AniSerp. Por una parte, como se ha comentado, parece tratarse de proteínas intracelulares,
que carecen de péptido señal, mientras que la forma madura de AniSerp parece ser extracelular. Además, las serpinas
de Caenorhabditis elegans constituyen por sí mismas un clade específico dentro de la familia, el clade L, aunque
se parecen fundamentalmente al clade B de serpinas intracelulares, mientras que AniSerp presenta mayor similitud
con las serpinas del clade C1, donde se encuentra clasificada la antitrombina III humana. Aunque una de las serpinas
de Caenorhabditis elegans, SRP-2, parece ser también una serpina de clase cruzada, inhibe a proteínas de naturaleza
diferente de las que se ven afectadas por AniSerp: la granzima B como serina proteasa y, en menor medida, la catepsina
V como cisterna proteasa. Además, considerando la estructura de su sitio catalítico, es improbable que SRP-2 presente
actividad antitrombina, una de las características principales de AniSerp.
En cuanto a otras serpinas que ya se conocían que presentan actividad anticoagulante y que, concretamente, son
capaces de inhibir la trombina, se han identificado a partir de organismos evolutivamente bastante distantes de los
nematodos, como son los propios seres humanos, el cangrejo Tachipleus tridentatus o el virus mixoma. La identidad
de la secuencia de cualquiera de estas serpinas con AniSerp no alcanza, en ninguno de los casos, el 40%. Además,
sus propiedades son, en general, diferentes de las de AniSerp, bien por inhibir la trombina, por ejemplo, al mismo
tiempo que algún otro factor de coagulación (Xa en el caso de las serpinas de PTI o el virus mixoma) o bien por
inhibir otras serina proteasas tales como plasmina y tripsina (caso de la serpina de Tachipleus tridentatus). Todo ello
es una indicación de que no era obvio pensar que podía existir una serpina capaz de inhibir la trombina de forma
independiente de la presencia de heparina, que pudiera identificarse en Anisakis simplex, pues ni su estructura ni sus
propiedades parecían esperables a partir de los conocimientos previos existentes.
La capacidad de inhibición de la trombina humana por parte de AniSerp, como se ha comentado, es dependiente de
la dosis. Según los ensayos descritos más adelante en los Ejemplos de la presente solicitud, presenta una concentración
inhibitoria 50 (CI50) de 36,68 µg/ml, y un mecanismo de inhibición que se mantiene, como mínimo, hasta 24 horas.
Las evidencias apuntan a que la inhibición es irreversible. Además, esta actividad probablemente podría explicar en
parte la acción anticoagulante in vitro sobre plasma humano que se ha descrito para los extractos crudos y excretores-
secretores de Anisakis simplex (Perteguer et al., 1996).
Por otra parte, los estudios de dinámica molecular que se describen más adelante en la presente memoria mostraron
que AniSerp parece inhibir la trombina mediante un mecanismo similar al del sustrato suicida, parecido al mecanismo
que muestran los inhibidores de la coagulación en mamíferos como la antitrombina III (AT) (el inhibidor natural de la
trombina) y el cofactor II de la heparina (HCII). Así, AniSerp presenta una estructura terciaria similar a la que exhiben
estos inhibidores humanos de serina proteasas, que pueden considerarse los principales reguladores de la coagulación
sanguínea.
La especificidad de ambos factores de control de la coagulación, sin embargo, no es la misma: la AT humana se
une tanto al factor Xa como a la trombina y es capaz de inhibir ambas, mientras que el HCII inhibe selectivamente
a la trombina, no afectando la actividad del factor Xa. Se ha descrito que las diferentes especificidades de la AT,
que es capaz de inhibir trombina y Xa, en comparación con HCII, que sólo inhibe la trombina, parecen ser debidas
a cambios de aminoácidos en el P1 y los residuos inmediatamente adyacentes localizados dentro de la secuencia de
reconocimiento del RCL de la enzima. La AT con una Arg en P1 es un inhibidor de las proteasas específicas de Arg,
trombina y Xa, mientras que HCII proporciona un inhibidor específico de trombina a pesar de tener un P1 desfavorable,
con Leu. (Gettins & Olson, 2009).
AniSerp, por su parte, inhibe selectivamente a la trombina, sin afectar a la actividad del factor Xa, tal como sucede
con el HCII. Estas características podrían explicarse por el hecho de que aunque AniSerp presenta una Arg (R) en
posición P1, como lo hace la AT, también muestra más de diez cambios en los residuos adyacentes del RCL. Además,
8 de estos residuos diferentes entre la AT y AniSerp se mantienen con respecto al HCII, que al igual que AniSerp
inhibe selectivamente la trombina pero no el factor Xa.
También, una de las características interesantes de AniSerp es que la actividad de la molécula no se ve afectada
por la presencia de heparina. En esto difiere tanto de la AT como del HCII, en los que la heparina actúa potenciando
la propiedad anticoagulante de ambos inhibidores. Dicha cualidad se explica por la ausencia de residuos cargados
positivamente en los sitios potenciales de unión a heparina en AniSerp. El hecho de tener una molécula anticoagulante
cuya acción no se ve potenciada por heparina permite la aplicación terapéutica de AniSerp en procesos tales como
estados de hipercoagulabilidad asociados al uso de heparina, como en el déficit adquirido de AT, que se produce
9
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
muchas veces en el contexto de la terapia con heparina. Así, en los pacientes a los que se les administra heparina en el
período preoperatorio (por ejemplo en intervenciones de bypass cardiopulmonar), se observa que un porcentaje de ellos
presentan un déficit significativo de AT y necesitan reposición del producto previo a la realización de la intervención,
bien en forma de plasma fresco congelado, bien como concentrado de AT. Por consiguiente, AniSerp se podría aplicar,
en general, a casos en los que la AT está reducida, tanto en los preoperatorios antes mencionados, como en enfermedad
hepática, en coagulopatías de consumo con coagulación intravascular diseminada y hemorragias masivas. El uso de
AniSerp no produciría consumo y después déficit de AT como produce la heparina. También podría utilizarse en casos
de trombosis relacionada con la trombopenia asociada a la heparina, cuando se precise de un nuevo tratamiento con
anticoagulantes. Y en general, AniSerp se podría aplicar en cualquier caso en que se necesite anticoagulación, evitando
los efectos secundarios que conllevan la administración de heparina o los asociados a la inhibición de la vitamina K
y/o a la depleción de factores de coagulación dependientes de la misma.
Hay que comentar que AniSerp es también capaz de inhibir, aunque con menor actividad y de manera reversible,
a las catepsinas G y L. Esta función requiere dosis mayores de AniSerp que la utilizada para conseguir la actividad
anticoagulante. La catepsina L es una cisterna proteasa mientras que la catepsina G es una serina proteasa. El hecho
de que AniSerp sea capaz de inhibir tanto a serina como a cisterna proteasa la convierte en lo que se denomina serpina
de clase cruzada (cross-class serpins). Ejemplo de ellas serían el antígeno 1 del carcinoma de células escamosas.
Por último, debe comentarse que se ha comprobado el reconocimiento de anticuerpos IgE de pacientes afecta-
dos de anisakidosis frente a AniSerp, observándose que no existían IgE específicas frente a AniSerp en ninguno de
ellos. Estos resultados, realizados en individuos con probabilidades de haber desarrollado esos anticuerpos, por estar
teóricamente expuestos a la proteína, parecen indicar que la administración de AniSerp no daría lugar a reacciones
alergénicas/inmunogénicas adversas. Los estudios preliminares realizados inmunizando conejos con adyuvantes muy
potentes dan lugar a títulos bajos de anticuerpos, lo que apoya aún más el escaso potencial inmunogénico de AniSerp
y su seguridad en su posible administración a seres humanos.
Así, AniSerp es el primer inhibidor de serina proteasas perteneciente a la familia de las serpinas descrito para el
nematodo Anisakis simplex. Además, es el primer informe de una serpina de nematodo que inhibe específicamente
la trombina, cuya actividad no es modificada por la heparina. El hecho de que AniSerp inhiba la trombina indepen-
dientemente de la heparina le confiere gran utilidad como anticoagulante. También, su selectividad por la trombina
hace de ella un miembro de la nueva clase de agentes antitrombóticos sobre los que hay gran interés, los inhibidores
selectivos de factores de coagulación específicos. Comparados con los fármacos convencionales, tienen el potencial
de ser más eficaces, seguros y fáciles de usar (Bauer, 2008). La utilidad de AniSerp viene apoyada por los buenos re-
sultados obtenidos al evaluar las propiedades anticoagulantes de otra proteína recombinante anticoagulante diferente
de nematodos, NAPc2, que han sido evaluadas para la prevención del tromboembolismo venoso postoperatorio, en pa-
cientes sometidos a artroplastia selectiva de la rodilla (Lee et al., 2001). Es más, los estudios clínicos con intervalos de
dosis terapéuticas, a continuación de administraciones subcutáneas repetidas, también muestran una respuesta inmune
baja a NAPc2, infrecuente y no robusta que fuerza a continuar con dichos estudios (Vlasuk et al., 2003). El hecho
de que AniSerp parezca no ser reconocida tampoco por los sueros de pacientes que padecen anisakidosis es también
un punto de interés, pues es otra prueba de la seguridad que ofrecería su uso. Así, parece que AniSerp podría ser un
nuevo fármaco anticoagulante alternativo, con propiedades que hacen interesante su uso en aplicaciones específicas,
particularmente, como se ha comentado, en los casos en los que se haya producido o se quiera evitar la aparición de
un déficit adquirido de antitrombina III.
La invención se explicará ahora con más detalle por medio de los Ejemplos y Figuras que aparecen a continuación.
Ejemplos
- Ejemplo 1
Clonación de AniSerp
El gen AniSerp se clonó en dos etapas, i) En una primera etapa se obtuvo el gen incompleto y, posteriormente, ii)
se aisló el gen completo.
i) El gen incompleto se obtuvo al realizar un cribado de una genoteca de expresión del nematodo Anisakis
simplex con anticuerpos monoclonales, en el que AniSerp fue un clon irrelevante (no reactivo) para los objetivos
del inmunocribado realizado.
Brevemente:
- A partir de larvas 3 (L3) del nematodo Anisakis simplex extraídas manualmente de bacaladillas (Micromesistius
poutassou), se sintetizaron ARN mensajeros (ARNm) utilizando el kit comercial “Fast Track mRNA isolation kit”
(Invitrogen).
- Utilizando como molde 5 µg de los ARN mensajeros, se sintetizó una colección de ADN complementarios
(ADNc) utilizando el kit comercial “ZAP-cDNA synthesis kit” (Stratagene), que posteriormente fueron ligados en el
vector de expresión λ-ZAP usando el kit comercial para la construcción de genotecas de ADNc en fagos λ escindibles
10
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
“Uni-ZAP XR library kit”, siguiendo las instrucciones de la casa comercial Stratagene. El título final de la genoteca
de expresión, una vez amplificada, fue de 1.3 x 1010 ufp/ml (unidades formadoras de placa) con un 1% de fagos no
recombinantes.
- Se realizó un cribado con anticuerpos de la genoteca de expresión. Los fagos se adsorbieron sobre filtros de
nitrocelulosa (Schleicher & Schuell) impregnados en 10 mM isopropyl thio-β-D-galactoside (IPTG). Tras realizar
una fase de bloqueo con TBS (tampón Tris pH 7,4 con 3% de albúmina sérica bovina (BSA)) una hora a 37ºC, las
membranas fueron incubadas con los anticuerpos monoclonales a la dilución adecuada en el tampón TBS, durante toda
la noche a 4ºC. Tras la adición de los anticuerpos secundarios correspondientes se visualizaron los inmunocomplejos
usando como sustrato NBT (nitro-blue tetrazolium salt: sal de nitroazul de tetrazolio) y BCIP (sal de 5 bromo-4-
cloro-3-indolil fosfato de p-toluidina) (Sigma). A partir de los clones de λ-ZAP se obtuvieron los fagémidos mediante
escisión “in vivo”, utilizando un fago de rescate “helper” (Short et al., 1988).
- La secuencia del ADN de uno de los clones (clon irrelevante para los objetivos del inmunocribado realizado, que
expresó una proteína recombinante no reconocida por el monoclonal que se utilizó en su aislamiento) mostró similitud
(2. 2e-36) en el GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/) con serpinas (NA: Q608754 Serine Protease Inhi-
bitor 3), si bien el gen se hallaba incompleto (clon 3A22). El fragmento del gen constaba de 1005 nucleótidos con una
secuencia deducida de 334 aminoácidos (aa), faltándole el extremo 5’ de la molécula.
ii) Obtención del gen completo
La información de la secuencia del gen incompleto permitió la síntesis de cebadores para aislar el gen completo a
partir de una colección de ADNc con adaptadores de secuencia conocida en sus extremos 5’ y 3’.
Brevemente
- A partir del ARNm obtenido de L3 de Anisakis simplex, se sintetizó una colección de ADNc a cuyos extremos
se ligó un adaptador de secuencia conocida (AP1). Para la reacción se utilizó el kit comercial “Marathon cDNA
amplification” (Clontech), que incluye el adaptador AP1.
- Obtención del gen completo, a partir de la colección de ADNc anteriormente sintetizados:
Amplificación rápida del extremo 5’ del clon 3A22 (RACE-PCR): Se utilizaron los siguientes cebadores:
Cebador directo AP1 (5’ CTAATACGACTCACTATAGGGC 3’: SEQ ID NO:4), cebador correspondiente
al adaptador AP1 creado en el extremo 5’de los ADNc sintetizados.
Cebador reverso SR1 (5’ ACCCGCAGTAGTTTTATCCATTTGTTCG 3’: SEQ ID NO:5), diseñado a par-
tir de la secuencia obtenida del clon 3A22 que solamente abarcaba el extremo 3’ del gen (nucleótidos de
la posición 160 a 186 en la secuencia nucleotídica del gen completo, como se comprobó posteriormente).
Amplificación por PCR de la secuencia completa codificante: Se diseñaron dos cebadores para la clonación
del gen completo, un cebador directo SER5’ (5’ ATGATGACAGCATTACCGTTTTTAAC 3’: SEQ ID
NO:6), con el codón de inicio ATG y parte de la nueva secuencia 5’ del gen y un cebador reverso SER3’
(5’ TCAGTGGAAACGACCAATAAACAGAATGCG 3’: SEQ ID NO:7) con el codón de terminación
TGA y parte de la secuencia 3’. Como resultado se obtuvo un ADNc completo de 1194 nucleótidos (397
aa), representada por la secuencia de SEQ ID NO:1, correspondiente a la serpina de Anisakis simplex.
- Ejemplo 2
Subclonación, expresión y purificación de AniSerp
Una vez clonado el gen, la primera etapa para iniciar la caracterización de AniSerp fue la subclonación del ADNc
en un vector de expresión para después inducir su expresión, seguida de la purificación de la proteína recombinante. El
análisis de la secuencia con el programa SignalP 3.0 Server (Bendtsen et al., 2004) mostró que la molécula contenía
un posible péptido señal (Metl-Gly25).
i) Subclonación
Se diseñaron dos cebadores con los sitios de restricción SmaI y NotI para facilitar la posterior subclonación del
ADNc de AniSerp en el vector de expresión pGEX-4T2 (Amersham). Además para hacer posible su expresión, se
escindió la secuencia correspondiente al péptido señal, empleando el cebador directo 5’-SER-SPS (5’ CCCGGGATG
CAGCAGACAATCGATGAT 3’) (SEQ ID NO:8). Como cebador reverso se utilizó 3’-SER-SPS (5’ GCGGCCGCT
CAGTGGAAACGACCAATAA 3’) (SEQ ID NO:9) que incluyó el codon de terminación TGA. Así, se obtiene un
ADNc de 1119 nucleótidos (372 aa más codón de parada), correspondiente a la serpina de Anisakis simplex (AniSerp).
11
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Como molde para la PCR se utilizó una dilución 1/100 del gen completo de la serpina de Anisakis simplex previamente
clonado.
Tras purificar los productos de amplificación de AniSerp, estos y el vector comercial pGEX-4T2 (Amersham Bios-
ciences) fueron digeridos con las enzimas de restricción SmaI y NotI. Se ligó el gen de AniSerp (sin el péptido señal)
al vector pGEX-4T2, previamente desfosforilado, con la enzima T4 ligasa (Promega) durante toda la noche a 16ºC.
Con el plásmido recombinante producido se transformaron células competentes XLIBlue [recA1 endA1 gyrA96 thi-
1 hsdR17 supE44 relA1 lac (F’ proAB lacIqZ∆M15 Tn10 (Tetr))] (Stratagene) de Escherichia coli siguiendo el pro-
tocolo recomendado por la casa comercial. Se realizó una selección de los recombinantes positivos por PCR usando
los cebadores 5’-SER-SPS y 3’-SER-SPS y como molde el ADN de las colonias crecidas. A partir de cultivos, en LB-
ampicilina, de los recombinantes positivos se extrajo el ADN plasmídico con el kit comercial QIAGEN. Tras con-
firmar por secuenciación la correcta subclonación, con el plásmido recombinante producido se transformaron células
competentes BL21 [F-, ompT, hsdS (rb-, mb-), gal] (Amersham Biosciences) de Escherichia coli mediante choque
térmico siguiendo el protocolo recomendado por la casa comercial.
ii) Expresión de la proteína recombinante
La expresión de la proteína recombinante se indujo de acuerdo a diferentes protocolos con el fin de obtener proteí-
nas de fusión solubles y con plegamiento similar al nativo, de forma que se pudieran llevar a cabo ensayos enzimáticos
con el producto de expresión purificado. Se ensayaron varios protocolos de expresión, en los que se combinaban
distintas temperaturas de incubación con diferentes concentraciones de inductor, ITPG (Isopropil β-D-1-tiogalactopi-
ranósido, de SIGMA) y diversos tiempos de incubación. Los protocolos testados fueron los siguientes.
◦ Ta incubación= 37ºC, ITPG= 1 mM, Tiempo=4 horas.
◦ Ta incubación= 37ºC, ITPG= 0,5 mM, Tiempo=4 horas.
◦ Ta incubación= 37ºC, ITPG= 0,1 mM, Tiempo=4 horas.
◦ Ta incubación= 37ºC, ITPG= 0,01 mM, Tiempo=4 horas.
◦ Ta incubación= 16ºC, ITPG= 1 mM, Tiempo=24 horas.
◦ Ta incubación= 16ºC, ITPG= 0,5 mM, Tiempo=24 horas.
◦ Ta incubación= 16ºC, ITPG= 0,1 mM, Tiempo=24 horas.
◦ Ta incubación= 16ºC, ITPG= 0,01 mM, Tiempo=24 horas.
El protocolo con Ta incubación=16ºC, ITPG= 0,01 mM, Tiempo=24 horas, proporcionó la proteína de fusión
AniSerp como un producto soluble. La proteína recombinante AniSerp, sin el péptido señal, tenía un marco abierto de
lectura de 1119 nucleótidos, que codificaban 372 residuos aminoacídicos, a los que hay que sumar los aminoácidos de
la molécula de GST (glutatión-S-transferasa).
iii) Purificación de la proteína recombinante (AniSerp)
Una vez obtenida la proteína de fusión AniSerp en su forma soluble, se purificó mediante cromatografía de afinidad
al glutatión empleando perlas de glutatión-Sefarosa (Amersham Biosciences), seguida de elución utilizando un tampón
de elución con glutatión 10 mM (Amersham Biosciences). Esta cromatografía se basa en el hecho de que las proteínas
de fusión a GST facilitan la purificación de los recombinantes gracias a la alta afinidad de la GST por la molécula
de glutatión. A través de este proceso se logró purificar la proteína recombinante en un estado similar a la molécula
nativa. Después, la AniSerp recombinante purificada se dializó y posteriormente se determinó la concentración de
proteína mediante el kit de ensayo de proteínas de BCA (Pierce, Smith et al., 1985), usando albúmina sérica bovina
como patrón.
- Ejemplo 3
Ensayos inhibitorios
Una vez purificada la proteína recombinante en su supuesta forma activa, se llevó a cabo el análisis de la secuencia
mediante BLAST (Basic Local Alignment Search Tool) con el fin de seleccionar las posibles dianas a estudiar. Las
comparaciones con la base de datos mostraron similitudes con diferentes inhibidores de serina proteasas descritas en
otros organismos. Los mayores valores de similitud se encontraron con el inhibidor de la serina proteasa, similar al del
clade B, de Bos taurus (XP001254097, valor E < 6,10−60), la serpina 3b de ratón (Mus musculus, AAR89288, valor
12
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
E < 4,10−59) y la proteína 1 relacionada con el antígeno 2 de carcinoma de células escamosas, también de ratón (Mus
musculus, AAN62872, valor E < 1,10−58), con un 37,2% de identidad con la primera y 36,7% con las dos últimas,
respectivamente, cuando la comparación se hace con el péptido señal, siendo aún menor la identidad (36,1% con
cualquiera de las tres proteínas citadas) cuando la comparación se hace sin el péptido señal. Como se ve, tanto en
el caso de la proteína madura como en el caso de la forma inmadura, no se encuentra ninguna secuencia con una
identidad con AniSerp que llegue al 40%). El valor E, que mide la Habilidad del porcentaje de similitud encontrado,
siendo éste más fiable cuanto menor sea el valor de E, es en todos los casos bastante bajo.
Debido a esta variabilidad, se decidió llevar a cabo los ensayos de actividad de inhibición de las siguientes serina-
proteasas: tripsina, plasmina, y trombina. Puesto que se encontraron coincidencias con una similitud significativa con
el antígeno 2 de carcinoma de células escamosa y las proteínas relacionadas, y estas serpinas son serpinas de clase
cruzada capaces de inhibir tanto cisterna proteasas como serina proteasas (Sakata et al., 2004), también se ensayó la
inhibición de la actividad de las cisterna proteasas catepsina B y L y de la serina proteasa catepsina G, cuya inhibición
de la actividad ha sido descrita para la serpina de clase cruzada 3b. Finalmente, se comprobó también la actividad
inhibitoria utilizando un sustrato que es hidrolizado específicamente por una serina proteasa de Anisakis simplex
descrita por Morris & Sakanary (1994) (SIGMA Aldrich).
Así, se estableció la actividad inhibitoria de AniSerp sobre ocho proteasas (plasmina, factor Xa, trombina, trip-
sina, catepsina B, catepsina L, catepsina G y la actividad serina proteasa de Anisakis simplex) midiendo la actividad
proteolítica residual después de la incubación de cada una de estas enzimas con AniSerp recombinante purificada (ser-
pina recombinante de Anisakis simplex más GST). Los sustratos utilizados para los ensayos enzimáticos de tripsina,
plasmina, trombina, factor Xa y catepsina B, L, y catepsina G fueron Boc-Gln-Ala-Arg-AMC en Tris-HCl 50 mM
pH 8, NaCl 0,15 M, CaCl2 1 mM; Boc-Val-Leu-Lys-AMC en Tris-HCl 50 mM pH 8, NaCl 50 mM; Boc-Val-Pro-
Arg-AMC en Tris-HCl 50 mM pH 8, NaCl 100 mM; Boc-Ile-Glu-Gly-Arg-AMC en Tris-HCl 50 mM pH 8,3, CaCl2
5 mM, NaCl 0,2 mM y Z-Arg-Arg-AMC, Z-Phe-Arg-AMC en Citrato sódico 50 mM pH 5,5, EDTA 5 mM, DTT
20 mM, BSA al 0,005% y N-Succinil-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA en Tris-HCl 50 mM pH 7,5 respectivamente. También
se realizaron ensayos con el sustrato NCBZ-Gly-Pro-Arg-AMC en Tris-HCl 50 mM pH 7,5 con NaCl 20 mM que
es específicamente hidrolizado por la serina proteasa de Anisakis simplex descrita por Morris & Sakanary (1994),
utilizando un extracto crudo del nematodo como fuente de la enzima. Todos los sustratos se adquirieron a SIGMA
Aldrich. Los ensayos se llevaron a cabo con la incubación previa de AniSerp con cada enzima durante 10 min a 37ºC,
en su tampón de reacción previamente indicado. La concentración óptima de cada enzima utilizada se determinó con
anterioridad mediante estudio de cinética enzimática seleccionando aquella concentración que mostraba una relación
lineal con el tiempo de reacción (30 min). Después de la adición de sustrato 100 µM a la mezcla de reacción, se midió
la actividad residual de la enzima mediante monitorización continua empleando, para los sustratos fluorescentes (con
AMC), longitudes de onda de excitación y emisión de 380 y 460 nm respectivamente, en un lector de fluorescencia
de microplacas Victor 3, 1420 de Perkin Elmer y para el sustrato cromogénico (pNA) una longitud de onda de 405
nm en un lector de absorbancia de microplacas ELX 800TM de Bioteck. Como control se utilizó la proteína glutatión
transferasa (GST). Los ensayos fueron realizados por triplicado y bajo condiciones en las que el tiempo de incubación
y la concentración de enzima guardaron una relación lineal con la actividad.
Los resultados obtenidos se muestran en la Fig. 2. Dicha Fig. 2 muestra que AniSerp fue capaz de inhibir sólo la
trombina y las catepsina L y G a una concentración de 500 µg/ml; Las otras proteasas no fueron inhibidas por AniSerp.
Merece destacarse que, mientras que la trombina fue completamente inhibida a esta concentración, el porcentaje de
inhibición de catepsinas fue significativamente menor, 36% para la catepsina L y 58% para la catepsina G. Estos
últimos resultados están en consonancia con la hipotética naturaleza de serpina de clase cruzada de AniSerp.
Además, debe resaltarse que sólo la inhibición de la trombina humana se mantuvo en el tiempo y fue dependiente
de dosis, mostrando una CI50 de 36,68 µg/ml, y observándose una inhibición de más del 90% con 200 µg/ml (Fig. 3).
- Ejemplo 4
Modelado estructural y de la interacción con trombina
Una vez demostrada la actividad antitrombina, se decidió llevar a cabo un análisis “in silico” de la molécula de
AniSerp con el fin de definir su posible modelo estructural y su interacción con la trombina humana, puesto que, en
general, las serpinas son una superfamilia de proteínas caracterizadas por plegarse en una estructura conservada y por
emplear un mecanismo inhibitorio único similar al de los sustratos suicidas. Con el fin de obtener una representación
fiable de las supuestas interacciones entre AniSerp y la trombina humana, se generaron tres modelos diferentes en
3D basados en la homología, correspondientes a los tres estadios diferentes de la serpina: inactivo o latente, activo
o nativo, y unido a trombina. Los modelos estructurales en tres dimensiones de AniSerp se ensamblaron utilizando
procedimientos de modelado por homología basados en las estructuras del Banco de Datos de Proteínas, seleccionadas
en base a la similitud superior de secuencias, cobertura y compatibilidad de secuencia respecto a la estructura.
Para generar los dos primeros modelos (inactivo o latente y activo o nativo), se aplicó una estrategia mixta basada
en búsqueda de moldes por secuencia y por secuencia frente a estructura, utilizando el algoritmo BLAST (Alts-
chul et al., 1997) y el servidor de engarzado (reconocimiento de plegamiento) Phyre (Bennett-Lovsey et al., 2008)
(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov; http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/phyre/).
13
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Los moldes seleccionados fueron dos serpinas diferentes, una en estado latente y otra en estado nativo, ambas con
un alto grado de similitud (valor E < 10−38) con respecto a la búsqueda original (secuencia de AniSerp). Los moldes
seleccionados fueron concretamente: 1DVN (forma latente del inhibidor I del activador del plasminógeno humano;
Stout et al., 2000) y 2DUT (conformación nativa de MENT:Myeloid and Erythroid Nuclear Termination stage-specific
protein, McGowan et al., 2006).
Una vez que se seleccionaron los moldes, se utilizaron procedimientos normalizados de modelado para generar
los modelos finales en 3D. Dichos modelos se construyeron utilizando las herramientas del servidor SWISS-MODEL
(Guex et al., 1999; Peitsch, 1996; Schwede et al., 2003) en http://swissmodel.expasy.org//SWISS-MODEL.html, y
su calidad estructural se comprobó empleando los programas de análisis proporcionados por el mismo servidor (Ano-
lea/Gromos/Verify3D). Para optimizar las geometrías, se buscó la minimización de la energía en los modelos utilizando
el campo de fuerza de GROMOS 43B1 implementado en DeepView (Guex & Peitsch, 1997), utilizando 500 pasos de
la minimización descendente con mayor pendiente, seguidos de 500 pasos de minimización de gradiente-conjugado.
Los modelos finales en 3D se muestran en la Fig. 4. El modelo de AniSerp latente mostró todas las características
descritas de las serpinas clásicas de mamíferos, con la presencia de una lámina β antiparalela de seis hebras, en las
que la hebra central contiene varios residuos del bucle central reactivo (RCL). Esta observación está en consonancia
con el hecho descrito por Zang & Maizels (2001), quienes comunicaron que, aunque las serpinas de nematodos tienen
una baja similitud en la secuencia primaria global con respecto a las serpinas de especies de mamíferos, son capaces
de adquirir una estructura terciaria común altamente ordenada que consiste en nueve hélices α y tres láminas β, que
permiten que el inhibidor interaccione específicamente con la enzima. La comparación de los modelos de la forma
latente y activa y, particularmente, de la posición del bucle del centro reactivo (RCL) en cada una de ellas, muestra la
gran reorganización estructural, asociada al cambio conformacional de la proteína, que se produce al pasar de una a
otra forma.
Para conseguir un modelo del complejo propuesto de AniSerp y trombina humana, se aplicó una estrategia similar
a la anterior, basada en búsqueda de moldes por secuencia y por secuencia frente a estructura, utilizando el algoritmo
Blast y el servidor de engarzado (reconocimiento de plegamiento) Phyre. De esta manera, se seleccionó el molde
de trombina 1JMO (Baglin et al., 2002), obtenido de la estructura cristalina del complejo trombina-co factor II de la
heparina humana, que incluye una forma inactiva de la trombina humana y el cofactor II de la heparina humana (HCII),
una proteína con un alto grado de similitud de secuencia (valor E < 10−33) con AniSerp. Además, previamente a la
dinámica molecular y, con el fin de obtener un modelo más realista, también se remodeló la estructura de la trombina
humana incluida en el archivo tipo PDB 1JMO, colocando un residuo de serina (Ser205) en el centro activo, en la
posición catalítica, en lugar de la alanina (Ala205) mutada que aparece en la forma inactiva cristalizada de la trombina
humana. El modelo global inicial de interacción obtenido se muestra en la Fig. 5A, en la que se puede ver cómo el
RCL expuesto de AniSerp interacciona con la trombina humana.
Finalmente, para obtener un modelo de alta calidad para el contacto propuesto entre la trombina humana y Ani-
Serp, la estructura resultante de los procedimientos de modelado por homología se sometió a una etapa corta, de 2
nanosegundos, de simulación de dinámica molecular normalizada utilizando el módulo PMEMD del paquete AM-
BER9 (Case et al., 2005) y el juego de parámetros parm99 de esta distribución. El objetivo de esta etapa es ayudar
a que los aminoácidos de las cadenas laterales, así como el esqueleto del RCL, encuentren una conformación estable
de baja energía. La estructura minimizada fue útil para analizar la naturaleza de los contactos específicos entre ambas
proteínas. La Fig. 5B muestra el surco del sustrato trombina (que implica a los aminoácidos de AniSerp Met358 a
Phe374). La Fig. 5C incluye los contactos con el centro activo, que implican a la tríada catalítica de la trombina His43,
Asp99 y Ser205, y los residuos de AniSerp Arg361 (P1) y Ser362 (P1’).
Como la antitrombina humana (AT) inhibe la actividad coagulatoria de las serina proteasas trombina y factor Xa,
también se ensayó el efecto de AniSerp sobre la actividad del factor Xa y no se encontró efecto alguno (Fig. 2-Factor
Xa).
- Ejemplo 5
Ensayo del efecto de la heparina
Está bien documentado que la actividad de inhibidores tales como AT y HCII se ve potenciada en gran medida por
la heparina, así que se decidió ensayar el efecto de la heparina sobre la actividad de AniSerp.
El ensayo se llevó a cabo en 200 µl de NaCl 0,15 mM, HEPES 0,02 mM, 1 mg/ml de polietilenglicol (Mr =
8.000), y 1 mg/ml de albúmina de suero bovino (BSA), pH 7,4. Las mezclas de la reacción de inhibición contenían 0,1
µg/ml-100 µg/ml de heparina y 30 µg/ml de serpina. La reacción se inició añadiendo trombina 5 nM. Después de 5
minutos de incubación, se añadieron 50 µl de una solución que contenía Boc-Val-Pro-Arg-AMC 100 µM y 1,5 mg/ml
de Polybrene. La actividad residual de la trombina se determinó midiendo la hidrólisis del sustrato fluorescente en un
lector de fluorescencia de microplacas (Víctor 3, 1420 de Perkin Elmer).
La heparina (0,1 a 100 µg/ml) no tuvo ningún efecto sobre la actividad de AniSerp aunque incrementó la actividad
inhibitoria de la AT de control.
14
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Con el fin de estudiar el diferente comportamiento de AniSerp, se investigaron los residuos de AniSerp que pu-
dieran ser sitios hipotéticos de unión de heparina mediante el alineamiento de la secuencia con los residuos de los
sitios de unión de AT y HCII, con heparina que han sido previamente descritos (Baglin et al., 2002). Adicionalmente
para comparar la posición en 3D de los sitios de unión de heparina, se llevó a cabo el alineamiento estructural entre el
modelo de AniSerp obtenido tras los procedimientos de dinámica molecular y las estructuras del Banco de Datos de
Proteínas 1JMO (HCII humana; Baglin et al., 2002) y 1ATH (antitrombina-III humana; Schreuder et al., 1994) utili-
zando el programa Dali (Holm et al., 2008). Los trazados de la estructura se generaron utilizando PyMOL (DeLano
Scientific, San Carlos, CA).
La Fig. 6 muestra la secuencia y el alineamiento estructural de las tres proteínas. Ninguno de los seis residuos
críticos (marcados como esferas en la Fig. 6) e implicados en la unión de la heparina al HCII (Lysl73, Argl84, Lysl85,
Argl89, Argl92, y Argl93) están presentes en la secuencia de AniSerp, y sólo se reconoce una sustitución conservativa
en la posición 192 (Arg/Lys). Esta carencia de conservación de residuos críticos puede explicar los resultados obtenidos
cuando la actividad de inhibición de AniSerp se ensayó en presencia de heparina.
Referencias bibliográficas
Altschul SF,Madden TL, Schäffer AA, Zhang J, Zhang Z,MillerW, Lipman DJ. (1997) Gapped BLAST and
PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Res 25: 3389-3402.
Ahrens I, Lip GY, Peter K (2010) New oral anticoagulant drugs in cardiovascular disease. Thromb Haemost.
104.1: 1-12.
Audicana MT, Kennedy MW (2008) Anisakis simplex: from obscure infectious worm to inducer of immune
hypersensitivity. Clin Microbiol Rev 21:360-379.
Baglin TP,Carrell RW,Church FC, Esmon CT,Huntington JA (2002) Crystal structures of native and thrombin-
complexed heparin cofactor II reveal a multistep allosteric mechanism. Proc Natl Acad Sci USA 99: 11079-11084.
Bauer KA. New anticoagulants (2008) Curr Opin Hematol 15: 509-515.
Bendtsen JD, Nielsen H, von Heijne G, Brunak S (2004) Improved prediction of signal peptides: SignalP 3.0. J
Mol Biol 340:783-795.
Bennett-LovseyRM,HerbertAD, SternbergMJ,Kelley LA (2008) Exploring the extremes of sequence/structure
space with ensemble fold recognition in the program Phyre. Proteins 70: 611-625.
Bier JW (1988) Anisakiasis. Laboratory Diagnosis of Infectious Diseases. Vol I. Bacterial, Mycotic and Parasitic
Diseases. (Edited by Balows A., Hausler, W. J. Jr, Ohashi M., Turano A.), pp. 768-774. Springer, New York.
Cappello M, Vlasuk GP, Bergum PW, Huang S, Hotez PJ. (1995) Ancylostoma caninum anticoagulant peptide:
a hookworm-derived inhibitor of human coagulation factor Xa. Proc Natl Acad Sci USA 92: 6152-6156.
Case DA, Cheatham TE 3rd, Darden T, Gohlke H, Luo R,Merz KM Jr, Onufriev A, Simmerling C,Wang B,
Woods RJ (2005) The Amber biomolecular simulation programs. J Comput Chem 26: 1668-1.
Coughlin P, Sun J, Cerruti L, Salem HH, Bird P (1993) Cloning and molecular characterization of a human
intracellular serine proteinase inhibitor. Proc Natl Acad Sci U S A 90:9417-9421.
Geraci JR, St Aubin DJ (1987) Effects of parasites on marine mammals. Int J Parasitol 17: 407-414.
Gettins PG, Olson ST (2009) Exosite determinants of serpin specificity. J Biol Chem 284:20441-20445.
Guex N, Diemand A, PeitschMC (1999) Protein modelling for all. Trends Biochem Sci 24: 364-367.
Guex N, PeitschMC (1997) SWISS-MODEL and the Swiss-PdbViewer: an environment for comparative protein
modeling. Electrophoresis 18: 2714-2723.
Holm L, Kaariainen S, Rosenstrom P, Schenkel A. (2008) Searching protein structure databases with DaliLite
v.3. Bioinformatics 24:2780-2781.
Ishikura H, Kikuchi K, Nagasawa K, Ooiwa T, Takamiya H, Sato N, Sugane K (1993) Anisakidae and anisa-
kidosis. Prog Clin Parasitol 3: 43-102.
Kobayashi Y, Ishizaki S, Nagashima Y, Shiomi K (2008) Ani s 1, the major allergen of Anisakis simplex: purifi-
cation by affinity chromatography and functional expression in Escherichia coli. Parasitol Int 57: 314-319.
15
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Kobayashi Y, Ishizaki S, Shimakura K, Nagashima Y, Shiomi K (2007) Molecular cloning and expression of
two new allergens from Anisakis simplex. Parasitol Res 100: 1233-1241.
Law RH, Zhang Q,McGowan S, Buckle AM, Silverman GA,WongW, Rosado CJ, Langendorf CG, Pike RN,
Bird PI,Whisstock JC. (2006) An overview of the serpin superfamily Genome Biol 7: 216.
Lee A, Agnelli G, Büller H, Ginsberg J, Heit J, Rote W, Vlasuk G, Costantini L, Julian J, Comp P, van Der
Meer J, Piovella F, Raskob G,GentM. (2001) Dose-response study of recombinant factor VIIa/tissue factor inhibitor
recombinant nematode anticoagulant protein c2 in prevention of postoperative venous thromboembolism in patients
undergoing total knee replacement. Circulation 104: 74-78.
McGowan S, BuckleAM, Irving JA,Ong PC, Bashtannyk-Puhalovich TA,KanWT,HendersonKN, Bulynko
YA, Popova EY, Smith AI, Bottomley SP, Rossjohn J, Grigoryev SA, Pike RN,Whisstock JC (2006) X-ray crystal
structure of MENT: evidence for functional loop-sheet polymers in chromatin condensation. EMBO J 25: 3144-3155.
Miura Y,Kawabata S, Iwanaga S (1994) A Limulus intracellular coagulation inhibitor with characteristics of the
serpin superfamily. Purification, characterization, and cDNA cloning. J Biol Chem 269:542-547.
Morgenstern KA, Sprecher C, Holth L, Foster D, Grant FJ, Ching A, Kisiel W (1994) Complementary DNA
cloning and kinetic characterization of a novel intracellular serine proteinase inhibitor: mechanism of action with
trypsin and factor Xa as model proteinases. Biochemistry 33:3432-3441.
Morris SR, Sakanari JA (1994) Characterization of the serine protease and serine protease inhibitor from the
tissue-penetrating nematode Anisakis simplex. J Biol Chem 269: 27650-27656.
Nash P,Whitty A, Handwerker J,Macen J,McFadden G (1998) Inhibitory specificity of the anti-inflammatory
myxoma virus serpin, SERP-1. J Biol Chem 273:20982-20991.
Nguyen TT, QasimMA,Morris S, Lu CC, Hill D, LaskowskiM Jr, Sakanari JA (1999) Expression and charac-
terization of elastase inhibitors from the ascarid nematodes Anisakis simplex and Ascaris suum. Mol Biochem Parasitol
102: 79-89
Pak SC, Kumar V, Tsu C, Luke CJ, Askew YS, Askew DJ,Mills DR, Brömme D, Silverman GA (2004) SRP-
2 is a cross-class inhibitor that participates in postembryonic development of the nematode Caenorhabditis elegans:
initial characterization of the clade L serpins. J Biol Chem 279:15448-15459.
PeitschMC (1996) ProMod and Swiss-Model: Internet-based tools for automated comparative protein modelling.
Biochem Soc Trans 24: 274-279.
PerteguerMJ, Raposo R, Cuéllar C (1996) In vitro study on the effect of larval excretory/secretory producís and
crude extraets from Anisakis simplex on blood coagulation. Int J Parasitol 26: 105-108.
Sakata Y, Arima K, Takai T, SakuraiW,Masumoto K, Yuyama N, Suminami Y, Kishi F, Yamashita T, Kato
T, Ogawa H, Fujimoto K, Matsuo Y, Sugita Y, Izuhara Kt (2004) The squamous cell carcinoma antigen 2 inhibits
the cysteine proteinase activity of a major mite allergen, Der p 1. J Biol Chem 279: 5081-5087.
Short JM, Fernández JM, Sorge JA, Huse WD (1988) λ-ZAP: a bacteriophage expression vector with in-vivo
excision properties. Nucleic Acid Res 16: 7583-7600.
Schreuder HA, de Boer B, Dijkema R,Mulders J, Theunissen HJ,Grootenhuis PD,HolWG (1994) The intact
and cleaved human antithrombin III complex as a model for serpin-proteinase interactions. Nat Struct Biol 1: 48-54.
Schwede T, Kopp J, Guex N, Peitsch MC (2003) SWISS-MODEL: An automated protein homology-modeling
server. Nucleic Acids Res 31: 3381-3385.
Silverman GA, Lomas DA (2004) Serpin identification, production, and characterization.Methods 32: 71-72.
Smith PK, Krohn RI, Hermanson GT, Mallia AK, Gartner FH, Provenzano MD, Fujimoto EK, Goeke NM,
Olson BJ, Klenk DC (1985) Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem 150: 76-85.
Stassens P, Bergum PW, Gansemans Y, Jespers L, Laroche Y, Huang S, Maki S, Messens J, Lauwereys
M, Cappello M, Hotez PJ, Lasters I, Vlasuk GP (1996) Anticoagulant repertoire of the hookworm Ancylostoma
caninum. Proc Natl Acad Sci USA 93:2149-2154.
Stout TJ,GrahamH,BuckleyDI,MatthewsDJ (2000) Structures of active and latent PAI-1: a possible stabilizing
role for chloride ions. Biochemistry 39: 8460-8469.
16
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
Ufer M. (2010) Comparative efficacy and safety of the novel oral anticoagulants dabigatran, rivaroxaban and
apixaban in preclinical and clinical development. Thromb Haemost 103:572-585.
VlasukGP,BradburyA,López-Kinninger L,Colón S,Bergum PW,Maki S,RoteWE (2003) Pharmacokinetics
and anticoagulant properties of the factor VIIa-tissue factor inhibitor recombinant Nematode Anticoagulant Protein
c2 following subcutaneous administration in man. Dependence on the stoichiometric binding to circulating factor X.
Thromb Haemost 90: 803-812.
Zang X, Maizels RM (2001) Serine proteinase inhibitors from nematodes and the arms race between host and
pathogen. Trends Biochem Sci 26:191-197.
Zang X, YazdanbakhshM, Jiang H, KanostMR,Maizels RM (1999) A novel serpin expressed by blood-borne
micro filariae of the parasitic nematode Brugia malayi inhibits human neutrophil serine proteinases Blood 94:1418-
1428.
17
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
REIVINDICACIONES
1. Un polipéptido cuya secuencia de aminoácidos comprende:
a) la secuencia representada por SEQ ID NO:3, o
b) una secuencia idéntica al menos en un 40% a SEQ ID NO:3 que presenta estructura de serpina con capa-
cidad de inhibir a la trombina humana, o
c) la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2, o
d) una secuencia idéntica al menos en un 40% a SEQ ID NO:2, que presenta estructura de serpina con
capacidad de inhibir a la trombina humana.
2. Polipéptido según la reivindicación 1, que comprende la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID
NO:3.
3. Polipéptido según la reivindicación 1, que comprende una secuencia de aminoácidos que presenta estructura de
serpina con capacidad de inhibir a la trombina humana, en el que dicha secuencia es idéntica a SEQ ID NO:3 en un
porcentaje que se selecciona del grupo del 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95%, 99%, 99,5% y 99,9%.
4. Polipéptido según la reivindicación 1, que comprende la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID
NO:2.
5. Polipéptido según la reivindicación 1, que comprende una secuencia de aminoácidos que presenta estructura de
serpina con capacidad de inhibir a la trombina humana, en el que dicha secuencia es idéntica a SEQ ID NO:2 en un
porcentaje que se selecciona del grupo del 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95%, 99%, 99,5% y 99,9%.
6. Polipéptido según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que es una proteína de fusión que comprende
la secuencia de una segunda proteína.
7. Polipéptido según la reivindicación 6, en el que la segunda proteína es la glutatión-S-transferasa.
8. Polipéptido según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, cuya capacidad de inhibición de la trombina
humana no se ve afectada por la presencia de heparina.
9. Polipéptido según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que presenta también capacidad de inhibir
las catepsinas G y L.
10. Una molécula aislada de ácido nucleico que comprende una secuencia que codifica una serpina con capacidad
de inhibir la trombina humana seleccionada del grupo que consiste en:
a) una secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia polipeptídica idéntica al menos en un 40% a
la secuencia representada por SEQ ID NO:3
b) una secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia polipeptídica idéntica al menos en un 40% a
la secuencia representada por SEQ ID NO:2;
c) una molécula de ácido nucleico complementaria a una de las anteriores.
11. Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 10, que comprende una secuencia que codifica una secuen-
cia polipeptídica idéntica a la representada por SEQ ID NO:3.
12. Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 10, que comprende una secuencia que codifica una secuen-
cia polipeptídica idéntica a la representada por SEQ ID NO:2.
13. Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 12, que comprende la secuencia representada por SEQ ID
NO: 1.
14. Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 10, que comprende un fragmento de secuencia que codifica
una secuencia polipeptídica que es idéntica a la representada por SEQ ID NO:2 al menos en un porcentaje que se
selecciona del grupo de 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95%, 99%, 99,5% y 99,9%.
15. Un vector de expresión que comprende la secuencia de ADN correspondiente a la molécula de ácido nucleico
de una cualquiera de las reivindicaciones 10 a 14 unida operativamente a una secuencia de control de la expresión.
18
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
16. Una célula hospedadora transformada con un vector de expresión de la reivindicación 15.
17. Célula hospedadora según la reivindicación 16, que es una bacteria, una levadura, o una célula eucariótica.
18. Un método para producir una proteína que comprende las etapas de:
a) cultivar la célula hospedadora transformada con un vector de expresión de la reivindicación 15 que permite
la expresión del polipéptido con capacidad de inhibir la trombina humana codificado en dicho vector de
expresión;
b) purificar el polipéptido sintetizado en la etapa a) de la célula o del medio celular.
19. Uso de un polipéptido de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9 para la preparación de un medicamento.
20. Uso según la reivindicación 19, en el que el medicamento está destinado a ser utilizado como anticoagulante.
21. Uso según la reivindicación 20, en el que el medicamento está destinado a pacientes en los que se sospeche
que puede haber alguna alteración en proteínas de la cascada de coagulación distintas de la trombina, a pacientes
inmunodeprimidos, a pacientes con trastornos hepáticos, a pacientes con coagulopatías de consumo con coagulación
intravascular diseminada, a pacientes que presenten estados de hipercoagulabilidad asociados al uso de heparina o a
pacientes con déficit de antitrombina III.
22. Uso según la reivindicación 20, en el que el medicamento está destinado a ser administrado como anticoagu-
lante durante períodos perioperatorios.
23. Uso según la reivindicación 22, en el que el medicamento está destinado a ser administrado durante el período
perioperatorio de la cirugía cardiopulmonar, y de la cirugía traumatológica.
24. Uso según la reivindicación 23, en el que el medicamento está destinado a ser administrado durante el período
perioperatorio de la cirugía traumatológica en tratamientos de sustitución completa de cadera y rodilla.
25. Uso según la reivindicación 19, en el que el medicamento está destinado a pacientes con síndrome coronario
agudo, fibrilación auricular, enfermedad coronaria crónica, prótesis mecánicas o articulares y válvulas cardíacas o
vasculares.
26. Uso según una cualquiera de las reivindicaciones 20 a 25, en el que el medicamento está destinado a ser
administrado sin la administración simultánea de heparina.
19
ES 2 374 054 A1
20
ES 2 374 054 A1
21
ES 2 374 054 A1
22
ES 2 374 054 A1
23
ES 2 374 054 A1
24
ES 2 374 054 A1
25
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
LISTA DE SECUENCIAS
<110> INSTITUTO DE SALUD CARLOS III;
UNIVERSIDAD CENTRAL DE VENEZUELA CARACAS
<120> NUEVO INHIBIDOR DE SERINA PROTEASA Y SU USO
<130> P-100994
<160> 9
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 1194
<212> DNA
<213> Anisakis simplex
<220>
<221> CDS
<222> (1)..(1191)
<223> Secuencia codificante de AniSerp, inhibidor de serina proteasa
<220>
<221> sig peptide
<222> (1)..(25)
<223> Péptido señal
<400> 1
1
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
2
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
<210> 2
<211> 397
<212> PRT
<213> Anisakis simplex
<400> 2
3
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
<210> 3
<211> 372
<212> PRT
<213> Anisakis simplex
<220>
<221> mat_peptide
<222> (1)..(372)
<223> Forma madura de AniSerp
<400> 3
4
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
5
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
<210> 4
<211> 22
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador directo de PCR AP1, para amplificación del extremo 5’ del clon 3A22 de Anisakis simplex
<400> 4
<210> 5
<211> 28
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador reverso de PCR SR1, para amplificación del extremo 3’ del clon 3A22 de Anisakis simplex
<400> 5
<210> 6
<211> 26
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador directo de PCR: SER5’, para amplificación del gen completo de AniSerp
<400> 6
<210> 7
<211> 30
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador inverso de PCR SER3’, para la amplificación del gen completo de AniSerp
<400> 7
<210> 8
<211> 27
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
6
510
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
ES 2 374 054 A1
<220>
<223> Cebador director de PCR 5’-SER-SPS
<400> 8
<210> 9
<211> 28
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador inverso de PCR 3’-SER-SPS
<400> 9
7
   
OFICINA ESPAÑOLA 
DE PATENTES Y MARCAS 
 
ESPAÑA 
  
21 N.º solicitud: 201031031 
22 Fecha de presentación de la solicitud:  03.07.2010 
32 Fecha de prioridad:  
 
INFORME SOBRE EL ESTADO DE LA TECNICA 
 
 
 51  Int. Cl. :    Ver Hoja Adicional 
  
 
 
DOCUMENTOS RELEVANTES 
 
 
 
Categoría 
 
56                                                                Documentos citados 
 
Reivindicaciones 
afectadas 
   
A 
  
  
A 
 
  
A 
  
  
A 
  
  
A 
  
  
WO 9610638 A1 (PPL THERAPAUTICS (SCOTLAND) LTD.) 11.04.1996,  
todo el documento. 
  
WO 9100291 A1 (AZKO N.V.) 10.01.1991,  
todo el documento. 
  
US 5427937  A  (MICHAEL CAPPELLO et al.) 27.06.1995, 
todo el documento. 
  
US 5420252  A  (HIROYURI KATO et al.) 30.05.1995, 
todo el documento. 
  
EP 0238473  A2 (MONSANTO COMPANY) 23.09.1987, 
todo el documento. 
  
1-26 
  
  
1-26 
 
  
1-26 
  
  
1-26 
  
  
1-26 
  
  
 
  Categoría de los documentos citados 
X: de particular relevancia 
Y: de particular relevancia combinado con otro/s de la  
     misma categoría 
A: refleja el estado de la técnica 
 
 
 
O: referido a divulgación no escrita 
P: publicado entre la fecha de prioridad y la de presentación  
    de la solicitud 
E: documento anterior, pero publicado después de la fecha  
     de presentación de la solicitud 
  
El presente informe ha sido realizado 
 para todas las reivindicaciones 
 
 
 para las reivindicaciones nº:  
 
 
Fecha de realización del informe 
12.01.2012 
 
Examinador 
M. M. García Coca 
 
Página 
1/4  
 
INFORME DEL ESTADO DE LA TÉCNICA 
 
Nº de solicitud: 201031031 
CLASIFICACIÓN OBJETO DE LA SOLICITUD 
 
 
 
C12N15/15 (2006.01) 
C07K14/81 (2006.01) 
A61K38/57 (2006.01) 
A61P7/02 (2006.01) 
 
Documentación mínima buscada (sistema de clasificación seguido de los símbolos de clasificación) 
 
C12N, A61P 
 
Bases de datos electrónicas consultadas durante la búsqueda (nombre de la base de datos y, si es posible, términos de 
búsqueda utilizados) 
 
INVENES, EPODOC 
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
  
Informe del Estado de la Técnica    Página 2/4 
 
OPINIÓN ESCRITA 
 
Nº de solicitud: 201031031 
  
 
 
  
 
Fecha de Realización de la Opinión Escrita: 12.01.2012  
 
 
 Declaración    
     
 Novedad (Art. 6.1 LP 11/1986) Reivindicaciones 1-26 SI 
  Reivindicaciones  NO 
     
 Actividad inventiva (Art. 8.1 LP11/1986) Reivindicaciones 1-26 SI 
  Reivindicaciones  NO 
 
 
 
 
  
Se considera que la solicitud cumple con el requisito de aplicación industrial. Este requisito fue evaluado durante la fase de 
examen formal y técnico de la solicitud (Artículo 31.2 Ley 11/1986). 
 
Base de la Opinión.- 
 
La presente opinión se ha realizado sobre la base de la solicitud de patente tal y como se publica. 
 
 
 
 
 
 
 
  
 
 
 
 
Informe del Estado de la Técnica    Página 3/4 
 
OPINIÓN ESCRITA 
 
Nº de solicitud: 201031031 
  
  
1. Documentos considerados.- 
 
A continuación se relacionan los documentos pertenecientes al estado de la técnica tomados en consideración para la 
realización de esta opinión. 
 
Documento Número Publicación o Identificación Fecha Publicación 
D01 WO 9610638 A1 (PPL THERAPAUTICS (SCOTLAND) LTD.) 11.04.1996 
D02 WO 9100291  A1 (AZKO N.V.) 10.01.1991 
D03 US 5427937   A  (MICHAEL CAPPELLO et al.) 27.06.1995 
D04 US 5420252   A (HIROYURI KATO et al.) 30.05.1995 
D05 EP 0238473   A2 (MONSANTO COMPANY) 23.09.1987 
 
2. Declaración motivada según los artículos 29.6 y 29.7 del Reglamento de ejecución de la Ley 11/1986, de 20 de 
marzo, de Patentes sobre la novedad y la actividad inventiva; citas y explicaciones en apoyo de esta declaración 
 
 
El objeto de la invención, tal y como se recoge en las reivindicaciones 1-26, es un polipéptido con estructura de serpina 
(SEQ ID NO: 2 y 3) con capacidad de inhibir a la trombina humana de forma independiente de heparina, donde dicho 
polipéptido puede unirse a una segunda proteína, dando una proteína de fusión donde la segunda proteína es la glutatión-S-
transferasa. Dicho polipéptido también presenta la capacidad de inhibir las catepsinas G y L (reiv. 1-9). Es también objeto de 
la invención el ácido nucleico que codifica para dicho polipéptido (reiv. 10-14), un vector de expresión que comprende el 
ácido nucleico (reiv. 15), una célula hospedadora transformada con el vector de expresión (reiv. 16 y 17), un método para 
producir la proteína (reiv. 18) y el uso del polipéptido de la invención para la preparación de un medicamento anticoagulante 
(reiv. 19-26). 
 
 
Novedad y Actividad Inventiva (Art. 6.1 y 8.1 de la Ley 11/1986 de Patentes). 
 
El documento D01 divulga un inhibidor de serina proteasa que no requiere la activación por heparina y que comprende una 
secuencia que interacciona con el sitio catalítico de la trombina inhibiendo la actividad proteolítica de la misma. Esta enzima 
puede ser administrada de forma independiente de la heparina.  
 
El documento D02 divulga variantes de la antitrombina humana III, las cuales presentan sustituciones en la región 
comprendida del aminoácido 384 al 396. Las sustituciones en esta región permiten de forma específica modular la 
dependencia de heparina de dicha proteína, de forma que se altera el efecto inhibitorio dependiente de heparina de inhibir a 
los factores IIa (trombina) y Xa. Una de las sustituciones hace que en presencia de heparina, la proteína conserve su 
capacidad de inhibir a la trombina, pero pierde la capacidad de inhibir al factor Xa.  
 
El documento D03 divulga una proteína anticoagulante obtenida del nematodo Ancylostoma, que presenta homología de 
secuencia con la familia de serpins Kunitz. Esta proteína prolonga en tiempo de vida de la protrombina y la tromboplastina, 
pero también inhibe a los factores VIIa y Xa dentro de la cascada de coagulación. 
 
El documento D04 divulga una antitrombina III humana mutada mediante métodos de DNA recombinante. Esta proteína 
tiene modificado el sitio de unión a la heparina, de forma que dicha proteína es activa en ausencia de heparina, y es efectiva 
como anticoagulante. 
 
El documento D05 divulga péptidos con capacidad de inhibir a las serina proteasas. Estos péptidos presentan una región 
con estructura de serpina de los cuales, algunos de ellos presentan capacidad de inhibir tanto a la trombina como a la 
catepsina G. Este documento también divulga un método para la síntesis de dichos péptidos, y su uso como inhibidores de 
las serina proteasas. 
 
 
Ninguno de los documentos citados (D01-D05), tomados solos o en combinación, revelan la invención definida en las 
reivindicaciones 1-26. Además, en los documentos citados no hay sugerencias que dirijan al experto en la materia hacia la 
invención definida por dichas reivindicaciones. Por lo tanto, el objeto de invención según se recoge en las reivindicaciones 1-
26, cumple con el requisito de novedad e implica actividad inventiva en el sentido de los artículos 6.1 y 8.1 de la Ley 11/1986 
de Patentes. 
 
Informe del Estado de la Técnica    Página 4/4